Биобанкирование ткани рака предстательной железы

Введение. Рак предстательной железы является наиболее распространенным онкологическим заболеванием  у мужчин. Получение высококачественных и диагностически точных образцов тканей имеет первостепенное значение для успеха исследований в области изучения рака предстательной железы. Забор нефиксированной ткани из образцов, полученных при радикальной простатэктомии, для исследовательских целей представляет собой сложную задачу. Карцинома предстательной железы часто не может быть выявлена при «грубом» осмотре, а эта опухоль, как известно, является многоочаговой и неоднородной, что представляет интерес для междисциплинарных исследований.

Цель исследования – разработать протокол, который увеличит точность и количество биобанкированной первичной ткани рака предстательной железы.

Материалы и методы. Удаленную нефиксированную предстательную железу рассекали лезвием на 2 половины по уретре, макроскопически определяли опухолевый очаг, делали 2 среза: 1-й разделяли на фрагменты и переносили в криопробирки и транспортные среды для хранения в биобанке, 2-й заливали гелем, проводили криотомию и гистологическую верификацию опухоли.

Результаты. Опухоль была обнаружена на замороженных срезах в 78,95 % (30/38) случаев. Среднее время от изъятия органа из брюшной полости до макроскопической оценки составило 8–10 мин, а общее время гистологической верификации – 30 мин. Проведенный контроль качества биобанкированного материала подтверждает, что разработанный протокол гарантирует репрезентативность опухолей и нормальных тканей для дальнейших исследований.

Заключение. В данной статье изложен метод биобанкирования свежей ткани предстательной железы, удаленной при радикальной простатэктомии. Преимущество метода состоит в использовании образцов ткани как для диагностики, так и для последующего изучения на клеточном и молекулярном уровнях.

1. Raychaudhuri R., Lin D.W., Montgomery R.B. Prostate cancer: a review. JAMA 2025;333(16):1433–46. DOI: 10.1001/jama.2025.0228

2. Bray F., Laversanne M., Sung H. et al. Global cancer statistics 2022: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin 2024;74(3):229–63. DOI: 10.3322/caac.21834

3. James N.D., Tannock I., N’Dow J. et al. The Lancet Commission on prostate cancer: planning for the surge in cases. Lancet 2024;403(10437):1683–722. DOI: 10.1016/S0140-6736(24)00651-2

4. Злокачественные новообразования в России в 2023 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, О.В. Шахзадовой. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена − филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 2024. 276 с.

5. Hall R., Bancroft E., Pashayan N. et al. Genetics of prostate cancer: a review of latest evidence. J Med Genet 2024;61(10):915–26. DOI: 10.1136/jmg-2024-109845

6. Titze U., Sommerkamp J., Stege C. et al. Ex vivo fluorescence confocal microscopy (FCM) ensures representative tissue in prostate cancer biobanking: a feasibility study. Int J Mol Sci 2022;23(20):12103. DOI: 10.3390/ijms232012103

7. Annaratone L., De Palma G., Bonizzi G. et al. Basic principles of biobanking: from biological samples to precision medicine for patients. Virchows Arch 2021;479(2):233–46. DOI: 10.1007/s00428-021-03151-0

8. Castellani D., Perpepaj L., Fuligni D. et al. Advancements in artificial intelligence for robotic-assisted radical prostatectomy in men suffering from prostate cancer: results from a scoping review. Chin Clin Oncol 2024;13(4):54. DOI: 10.21037/cco-24-52

9. Ricciardelli C., Bianco-Miotto T., Jindal S. et al. Comparative biomarker expression and RNA integrity in biospecimens derived from radical retropubic and robot-assisted laparoscopic prostatectomies. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2010;19(7):1755–65. DOI: 10.1158/1055-9965.EPI-10-0059

10. Schlomm T., Näkel E., Lübke A. et al. Marked gene transcript level alterations occur early during radical prostatectomy. Eur Urol 2008;53(2):333–46. DOI: 10.1016/j.eururo.2007.03.075

11. Dev H., Rickman D., Sooriakumaran P. et al. Biobanking after robotic-assisted radical prostatectomy: a quality assessment of providing prostate tissue for RNA studies. J Transl Med 2011;9:121. DOI: 10.1186/1479-5876-9-121

12. Berrino E., Annaratone L., Miglio U. et al. Cold formalin fixation guarantees DNA integrity in formalin fixed paraffin embedded tissues: premises for a better quality of diagnostic and experimental pathology with a specific impact on breast cancer. Front Oncol 2020;10:173. DOI: 10.3389/fonc.2020.00173

13. Bertilsson H., Angelsen A., Viset T. et al. RNA quality in fresh frozen prostate tissue from patients operated with radical prostatectomy. Scand J Clin Lab Invest 2010;70(1):45–53. DOI: 10.3109/00365510903540815

14. Müller A., Hovanec J., Josephs B. et al. A two-level biobank data protection concept for project-driven human sample collections. Biopreserv Biobank 2019;17(4):312–8. DOI: 10.1089/bio.2018.0112

15. Malsagova K., Kopylov A., Stepanov A. et al. Biobanks – a platform for scientific and biomedical research. Diagnostics 2020;10(7):485. DOI: 10.3390/diagnostics10070485

16. Bledsoe M.J. Ethical legal and social issues of biobanking: past, present, and future. Biopreserv Biobank 2017;15(2):142–7. DOI: 10.1089/bio.2017.0030

17. Сорокина А.Г., Орлова Я.А., Григорьева О.А. и др. Создание коллекции биологических образцов разного типа, полученных от пожилых пациентов, для изучения взаимосвязей клинических, системных, тканевых и клеточных биомаркеров накопления сенесцентных клеток при старении. Кардиоваскулярная терапия и профилактика 2021;20(8):3051. DOI: 10.15829/1728-8800-2021-3051

18. Носов Д.А., Волкова М.И., Гладков О.А. и др. Практические рекомендации по лекарственному лечению рака предстательной железы. Злокачественные опухоли 2021;10(3s2-1):556–72. DOI: 10.18027/2224-5057-2020-10-3s2-33

19. Kofanova O.A. Mommaerts K., Betsou F. Tube polypropylene: a neglected critical parameter for protein adsorption during biospecimen storage. Biopreserv Biobank 2015;13(4):296–8. DOI: 10.1089/bio.2014.0082

20. ISBER best practices: recommendations for repositories. 5th ed., 2023. Available at: https://www.ihmt.unl.pt/wp-content/uploads/2024/07/ISBER-Best-Practice-2023-5th-edition.pdf

21. ГОСТ Р ИСО 20184-1-2021 Молекулярные исследования in vitro – Требования к процессам преаналитического этапа исследования замороженных тканей. Часть 1: Выделенная РНК. Доступно по: https://gostassistent.ru/doc/fbf06485-b3f144fc-8142-6d546e2af0c0

22. ГОСТ Р ИСО 20184-2-2021 Молекулярные исследования in vitro – Требования к процессам преаналитического этапа исследования замороженных тканей. Часть 2: Выделенные белки. Доступно по: https://docs.cntd.ru/document/1200181042

23. SPIDIA (Standardization and Improvement of Generic Pre-analytical Tools and Procedures for In Vitro Diagnostics) Available at: https://www.spidia.eu/projects/standard-documents

24. ГОСТ Р ИСО 20387-2021 Биотехнология. Биобанкинг. Общие требования. Доступно по: https://docs.cntd.ru/document/1200181384

25. Cai P.Y., Asad M., Augello M.A. et al. A multidisciplinary approach to optimize primary prostate cancer biobanking. Urol Oncol 2022;40(6):271.e1–7. DOI: 10.1016/j.urolonc.2022.03.015

26. Хабаров О.Р., Сеферов Б.Д., Алиев К.А. и др. Биобанкирование образцов опухолевых тканей для научных исследований в морфологии и молекулярной онкологии. Исследования и практика в медицине 2024;11(1):29–39. DOI: 10.17709/2410-1893-2024-11-1-3